Welcome to Molecular Station! Velkommen til Molecular Station!

You have to register before you can post on our forums or use our advanced features. Du må registrere deg før du kan poste på vårt forum eller bruke vår avanserte funksjoner. Register Now! Registrer deg nå! Its Free and Fast! Its Gratis og rask!

Already registered? Allerede registrert? Login now below. Logg inn nå nedenfor.

User Name: User Name:

Password: Passord:

Remember Me? Husk meg?

Already registered and Forgot your password? Allerede registrert og Glemt passord? Click below to recover it. Klikk nedenfor for å gjenopprette den.

Recover Lost Password Recover Lost Password

Join now - it's fast and free! Bli medlem nå - det er raskt og gratis!

Molecular Station is THE largest network of researchers, scientists and science lovers anywhere! Molecular Station er den største nettverk av forskere, vitenskapsmenn og vitenskap elskere overalt!

Recent Forum Posts Recent Forum Posts

Transgenic Animals Transgenic Animals

How Transgenic Animals are Generated Hvordan Transgenic Dyr er generert

Copyright Molecular Station 2006 Copyright Molecular Station 2006

Transgenic Plants Transgenic Plants

In nature, plant cells often live in close association with cerain bacteria, which may provide a convenient vehicle for introducing cloned DNA into plants.  Agrobacterium tumefaciens, for example, attaches to the cells of dicotledonous plants and causes the formation of plant tumours known as galls.  This bacterium introduces a circular DNA molecule called the Ti (tumour-inducing) plasmid into the plant cell in a manner similar to bacterial conjugation.  The plasmid DNA then recombines with the plant DNA.  Since the Ti plasmid has been isolated, new genes can be inserted into it using recombinant DNA techniques and the Ti genes causing tumours can be disrupted.  The resulting recombinant plasmid can then transfer desired genes into plant cells. I naturen, plante-cellene ofte lever i nær tilknytning til cerain bakterier, som kan gi et praktisk redskap for å innføre klon DNA i planter. Agrobacterium tumefaciens, for eksempel, legger til cellene av dicotledonous planter og fører til dannelse av anlegget tumours kjent som galls . Bacterium introduserer et sirkulært DNA molekyl kalt TI (svulst-inducing) plasmid inn i anlegget celle på en måte som ligner på bakterielle conjugation. Plasmid DNA deretter recombines med plante-DNA. Siden Ti plasmid har vært isolert, nye gener kan bli satt inn i den ved hjelp av rekombinant DNA teknikker og TI gener forårsaker tumours kan avbrytes. resulterende rekombinant plasmid kan deretter overføre ønskede gener i anlegget celler.
An especially useful characteristic of plants for transgenic studies is the ability of cultured plant cells to give rise to mature plants.  meristemativ (growing) cells from dissected plant tissue or cells within excised parts of a plant will grow in culture to form callus tissue, an undifferntiated lump of cells.  Under the influence of plant growth hormones, different plant parts (roots, stems, and leaves) develop from the callus and eventually grow into whole fertile plants.  When an agrobacterium containing a recombinant Ti plasmid infects a cultured plant cell, the newly incorporated foreign gene is carried into the plant genome.  A. tumefaciens readily infects dicots (petunia, tobacco, carrot) but not monocots; reliable techniques for introducing genes into monocots are still being developed.  Direct introduction of DNA by electroporation has been successful in rice plants, (which are monocots), and the future looks bright for the manipulation of other commercially important monocotyledonous crop plants.  Also available for gene transfer experiments are cells of a tiny, rapidly growing memberof the mustard family called Arabidopsis thaliana.  This plant appears to be well suited to geentic analysis of a variety of developmental and physiological processes.  It takes up little space, is easy to grow, and has a small genome, and genes defined by mutations can be cloned by positional cloning strategies. En særlig nyttig karakteristiske planter for transgenic studier er muligheten for cultured anlegget celler til å gi opphav til modne planter. Meristemativ (voksende) celler fra dissected anlegget vev eller celler innen excised deler av et anlegg vil vokse i kultur for å danne callus tissue, en undifferntiated klump av celler. under påvirkning av plantevekst hormoner, ulike plante-deler (røtter, stammer og blader) utvikles fra callus og eventuelt vokse i hele frodige planter. Når en agrobacterium inneholder en rekombinant Ti plasmid infects cultured en plante celle, den nylig innlemmet utenlandske genet er gjennomført i anlegget genome. A. tumefaciens lett infects dicots (petunia, tobakk, gulrot), men ikke monocots; pålitelige teknikker for innføring av gener i monocots er fortsatt under utvikling. Direkte innføring av DNA by electroporation har vært vellykket i ris anlegg, (som er monocots), og fremtiden ser lys for manipulasjon av andre kommersielt viktige monocotyledonous beskjære planter. også tilgjengelig for genetisk overføring eksperimenter er celler i et lite, raskt voksende memberof det sennep familien kalles Arabidopsis thaliana. Anlegget synes å være godt egnet til geentic analyse av en rekke utviklingsmål og fysiologiske prosesser. Det tar opp lite plass, er lett å vokse, og har en liten genome, og gener som defineres av mutasjoner kan bli klon av posisjonelle kloning strategier.

Transgenic Fruit Flies Transgenic fruktfluer

Foreign DNA can be incorporated into the Drosophila germ-line genome by the technique of P-element transformation.  This technique makes use of a segment of the P element, a highly mobile DNA element, which can transpose from an extrachromosomal element into a chromosome.  Generally, this procedure results in incorporation of a single copy of the transgene into the Drosophila genome.  In contrast, transgenic mice carry multiple copies of the transgene incorporated into their chromosomes.  In both organisms, however, the chromosomal insertion site is highly variable. Foreign DNA kan bli innlemmet i Drosophila bakterie-line genome av teknikken av P-element transformasjon. Denne teknikken gjør bruk av et segment av P-element, et svært mobile DNA-element som kan transponere fra en extrachromosomal element i et kromosom. Vanligvis er denne prosedyren resulterer i inkorporering av en enkelt kopi av transgene i Drosophila genome. I kontrast transgenic mice bære flere eksemplarer av transgene innarbeidet i sine chromosomes. I begge organismer, derimot, chromosomal innsetting av området er svært variabel.
Flies that develop from injected embryos will carry some germ cells that have incorporated the transgene; some of their progeny will carry the transgene in all somatic and germ-line cells, giving rise to pure transgenic lines.  Individuals carrying the transgene are recognized by expression of a marker gene (eg, one affecting eye color) that is also present on the donor DNA.  Although the transgenes in Drosophila and mice insert in chromosomal sites different from the position of the corresponding endogeneous gene, they usually are expressed in the right tissue and right time during development. Fluenes som utvikler fra injisert embryo vil bære noen bakterie celler som har tatt den transgene; noen av sine progeny vil bære transgene i alle somatiske og bakterie-celler, noe som gir opphav til rene transgenic linjer. Personer frakte de transgene er anerkjent av uttrykk av en markør genet (for eksempel en påvirker øyenfarge) som også er til stede på donor DNA. Selv om transgenes i Drosophila og mus sette inn i chromosomal områder forskjellig fra plasseringen av tilsvarende endogeneous genet, har de vanligvis er uttrykt i riktig vev og rett tid under utvikling.

Copyright Molecular Station 2006 Copyright Molecular Station 2006