Welcome to Molecular Station! Velkommen til Molecular Station!

You have to register before you can post on our forums or use our advanced features. Du må registrere deg før du kan poste på vårt forum eller bruke vår avanserte funksjoner. Register Now! Registrer deg nå! Its Free and Fast! Its Gratis og rask!

Already registered? Allerede registrert? Login now below. Logg inn nå nedenfor.

User Name: User Name:

Password: Passord:

Remember Me? Husk meg?

Already registered and Forgot your password? Allerede registrert og Glemt passord? Click below to recover it. Klikk nedenfor for å gjenopprette den.

Recover Lost Password Recover Lost Password

Join now - it's fast and free! Bli medlem nå - det er raskt og gratis!

Molecular Station is THE largest network of researchers, scientists and science lovers anywhere! Molecular Station er den største nettverk av forskere, vitenskapsmenn og vitenskap elskere overalt!

Recent Forum Posts Recent Forum Posts

Soil Microorganisms Bacterial Culture Soil Microorganisms Bacterial Kultur

Information on the Growth of Soil Bacterial Cultures and their Analysis Informasjon om veksten av jord Bacterial kulturer og deres analyse

Table of Contents: Innholdsfortegnelse:

Agar Plate and Agar Media Troubleshooting and Forum Topics Agar Plate og Agar Media Feilsøking og Forum Emner

Related Microbiology Articles Relaterte mikrobiologi artikler

Join the Microbiology Newsletter ! Bli med i mikrobiologi Nyhetsbrev!

What are Soil Microorganisms - Definition? Hva er Soil Microorganisms - Definisjon?

Soil microorganisms such as bacteria are vital for crops and agriculture. Jord mikroorganismer som bakterier er viktig for avlinger og jordbruk. Their study is crucial in the study and improvement of crop growth and culture. Deres studie er avgjørende i studien og forbedring av beskjære vekst og kultur.

Experiments on Soil Microorganisms: Eksperimenter på Soil Microorganisms:

A Comparative Study of the Number and Types of Microorganisms in Soil A Comparative Study of antall og typer av mikroorganismer i jord

The plate method of soil Bacterial Analysis The plate method of soil Bacterial analyse

Apparatus Needed for Study Apparat Trengs for Study

Sterile soil borer; sterile paper bag; sterile large spatula; sterile large piece of paper; sterile paper 15 cm. Sterile jord borer; sterilt papir pose; steril store spatula; steril stort stykke papir; sterilt papir 15 cm. Square; 500 cc wide-mouthed flask containing 200 cc sterile water; 90 and 99 cc dilution flasks (sterile water); ordinary agar; sterile Petri dishes; soil (different types), manure, etc. Square, 500 cc wide-mouthed flaske inneholder 200 cc sterilt vann; 90 og 99 cc fortynning flasks (sterilt vann); ordinære agar; steril Petri retter; jord (ulike typer), gjødsel, etc.

Each student should use one type of soil and one type of manure for this experiment. Hver student bør bruke en type jordsmonn og en type gjødsel for dette eksperimentet. Assignments will be made by the instructor. Oppg. vil bli gjort av instruktøren. The results obtained by each student are to be compared with those of others. Resultatene som oppnås ved hver student er å bli sammenlignet med de andre.

Method / Protocol for Soil Analysis Metode / protokoll for Soil Analysis

1. Remove the coarser surface debris from the soil. Fjern coarser overflaten avfall fra jord. Sink the soil borer to the depth of 30 cm., remove the borer and place the soil in the bag. Sink jorden borer til dybde på 30 cm. Fjerner du borer og plassere jordsmonn i vesken.

2. Take six borings so that your composite sample will be representative of the entire plot under considera tion. Ta seks borings slik at kompositt prøven vil være representant for hele tomten under considera beid.

3. At the laboratory, carefully mix and pulverize the composite sample with the spatula on the large piece of paper. På laboratoriet nøye blanding og pulverize det sammensatte eksemplar med spatula på stort stykke papir.

4. Weigh out 20 gms. Weigh ut 20 GMS. On sterile paper and transfer immediately to the flask containing 200 cc of sterile water. På sterilt papir og overføre umiddelbart til flaske inneholder 200 cc av sterilt vann. A large amount of soil is used to reduce the error as much as possible. En stor mengde av jord brukes til å redusere feil så mye som mulig. The manure should be treated in a similar manner. The manure bør bli behandlet på en lignende måte.

5. Shake thoroughly for one minute, allow the coarser particles to settle and transfer 10 cc (equivalent to 1 gm. Of soil) of the supernatant liquid to 90 cc of .sterile water. Shake grundig til ett minutt, la coarser partikler til å bosette og overføre 10 cc (tilsvarer 1 gm. Av jord) av supernatant væske til 90 cc. Sterilt vann. Each cubic centimeter of this dilution then contains 0.01 gm. Hver cubic centimeter av denne fortynning og inneholder 0,01 gm. Soil.

6. Make and plate from the following dilutions: 1-10, 1-100, 1-1000, 1-10,000, 1-100,000, 1-1,000,000. Lag og plate fra følgende dilutions: 1-10, 1-100, 1-1000, 1-10000, 1-100000, 1-1000000.

7. Incubate at room temperature for four to eight days. Incubate ved romtemperatur til fire-åtte dager.

8. Count and record the results as number of bacteria per gram of soil or manure, in tabular form. Count og registrere resultatene som antall bakterier per gram av jord eller gjødsel, i tabellformat.

9. Record the number of the various types of micro organisms. Record antall forskjellige typer mikro-organismer. Note the numbers of chromogenic bacteria and the streptothrix forms. Noter antall kromogent bakterier og streptothrix former.

10. Examine some of the manure in the hanging drop. Undersøk noen av gjødsel i hengende slipp. What forms are seen? Hvilke former er sett? Make drawings. Lag tegninger. Are all of these forms found on the plates? Er alle disse skjemaene finnes på platene? Give reasons for what does occur. Gi grunner for hva oppstå. Add sterile water to the manure in a sterile deep culture dish or flask and examine every three or four days during the course of the experiment. Legg til sterilt vann til gjødsel i en steril dypt kultur antenne eller kolbe og undersøke alle tre eller fire dager i løpet av eksperimentet. Record your obser vations. Registrer obser vations.

11. When the peat sample is obtained, at the same time partially fill a small sterile flask with swamp or marsh water. Når torv prøven er oppnådd, samtidig delvis fylle en liten steril flaske med myr myr eller vann. Examine immediately in the hanging drop and draw the forms seen. Undersøk umiddelbart i hengende slipp og tegne former sett.

12. Place this swamp water in the sunlight (more or less direct) for two or three days and examine again in the hanging drop for any forms of life present. Plasser denne myr vann i sollys (mer eller mindre direkte) for to eller tre dager og undersøke igjen i hengende slippe til noen former for liv til stede.

13. Compare the flora of these two microscopical prep arations. Sammenlign flora av disse to microscopical prep arations. Suggest why each type of organism is present. Foreslå hvorfor hver type organisme er tilstede.

14. Compare all types of soil examined both quanti tatively and qualitatively as to their microflora. Sammenlign alle typer jord undersøkt både quanti tatively og kvalitativt som til sine microflora. Which soils are most alike in their flora? Hvilke jordarter er mest både i flora? Suggest a reason why. Foreslå en grunn hvorfor. Why do various soils vary in the number of bacteria found? Hvorfor ulike jordarter variere i antall bakterier funnet?

References for Soil Microbiology Referanser for Soil Microbiology

• MARSHALL: Microbiology, pp. Marshall: mikrobiologi, pp. 226-245.
• CONN: Agricultural Bacteriology, pp. Conn: Agricultural Bacteriology, pp. 34, 70, 120. 34, 70, 120.
• EYRE: Bacteriological Technic. Eyre: bakteriologiske teknisk. Second Ed., pp. Second Ed., Pp. 470-478.

B)

The Microscopical Method for Soil Bacteria Microorganism Analysis Den Microscopical Metode for Soil Bakteriene Microorganism analyse

Apparatus Apparat

Soil or manure of same type as used for plating; sterile water; sterile Chinese ink; platinum loop of known capacity; sterile watch glass; cover-glasses, absolutely clean] ocular micrometer; stage (object) microm eter. Jord eller gjødsel av samme type som brukes for plating; sterilt vann; steril kinesisk blekk; platina sløyfe kjent kapasitet; steril se glass; cover-briller, absolutt ren] ocular mikrometer; stage (objekt) microm eter.

Method Metode

1. To 1 gm. Til 1 gm. of soil or excrement (manure) in a test tube add 4 cc of sterile water and shake vigorously for five minutes. av jord eller excrement (gjødsel) i en test tube legge 4 Kopi av sterilt vann og riste vigorously for fem minutter.

2. Place 0.5 cc in a clean, sterile watch glass. Place 0,5 cc i en ren, steril se glass. Add 0. Legg til 0. 5 cc of Chinese ink. 5 Kopi av kinesisk blekk.

3. Mix with a platinum loop of known capacity. Bland med en platina sløyfe kjent kapasitet.

Note. Merk. To determine the capacity of the platinum loop, weigh two watch glasses. For å fastslå kapasiteten til platina løkke, veie to watch glasses. Into one put exactly 1 gm. Into en sette nøyaktig 1 gm. (1 cc) of water. (1 cc) av vann. Transfer five loopfuls from the glass containing water to the empty watch glass. Transfer fem loopfuls fra glass med vann til det tomme se glass.

Weigh each. Weigh hver. Then determine the weight and also the volume of one loopful. Deretter finne ut vekten og volumet av en loopful.

4. Transfer one loopful of the " ink manure " solution to a clean, sterile cover-glass and spread in an even film over the entire surface. Overfør en loopful av "blekk gjødsel" løsning til en ren, steril tildekking glass og spres i en enda film over hele overflaten.

5. Let this dry in air and fix by passing three times through the flame. La denne tørke i luft og fikse ved å sende tre ganger gjennom flammene. Mount at once in balsam. Mount samtidig i Balsam.

6. Measure the surface area of the cover-glass. Mål arealet av dekselet-glass. Also the diameter of one field of the oil immersion lens (using the stage micrometer) and from that the area of the field. Også diameter på ett felt av olje immersion linse (ved hjelp av scenen mikrometer) og fra det området av feltet.

7. Count fifty fields and determine the average. Count femti felt og finne det gjennomsnittlige.

8. From the data which you now have, determine the number of organisms on the cover-glass, which is the number in one loopful. Fra dataene som du har nå, fastslår antall organismer på framsida-glass, som er nummeret i en loopful.

9. Then from this calculate the number in 1 gm. Deretter fra dette beregne tall i 1 gm. Of soil or excrement. Av jord eller excrement.

10. Also calculate the weight of bacteria in 1 gm. Også beregne vekten av bakterier i 1 gm. (See p. 88, Marshall's Microbiology.) (Se side 88, Marshall's mikrobiologi.)

11. Compare the count thus obtained with the count obtained by the plate method. Sammenlign teller dermed oppnådd med telle innhentet av platen. What is shown? Hva er vist? How do you explain this result? Hvordan vil du forklare dette resultatet?

12. Compare the manure and soil counts. Sammenlign gjødsel og jord teller. Draw con clusions and explain. Tegn con clusions og forklare.

13. What other methods are used for obtaining numbers, etc., of organisms in soil and like materials? Hvilke andre metoder brukes for å skaffe tall, osv., av organismer i jord og som materiale?

14. State your data and observations in full. State dine data og observasjoner i sin helhet. Draw any conclusions warranted and point out any practical applications. Tegn noen konklusjoner hjemlet og peker på noen praktiske anvendelser.

References for Microscopy Method of Soil Microorganism Analysis Referanser til Mikroskopi Method of Soil Microorganism analyse

• LOHNIS: Laboratory Methods in Agricultural Bacteriology, pp. LOHNIS: Laboratory Methods på landbruksbaserte Bacteriology, pp. 89-91.
• LIPMAN and BROWN: Laboratory Guide in Soil Bacteriology, pp. LIPMAN og brunt: Laboratory Guide i jord Bacteriology, pp. 7-9. MARSHALL: Microbiology, pp. Marshall: mikrobiologi, pp. 238-244.