Protocoles d'embryologie de souris

Protocole pour le transfert d'embryon de blastocyst dans la souris femelle réceptive pseudopregnant. - [Transfert lu d'embryon de Blastocyst dans le protocole de souris de Pseudopregnant]

L'information et protocole pour des souris d'élevage. - [Protocole lu de souris d'élevage]

Le protocole décrit une méthode pour rassembler des blastocysts des souris femelles enceintes au coitum de poteau de 3.5 à 4.5 jours (DPC). Les blastocysts peuvent alors être injectés avec les cellules de tige embryonnaires pour faire des chimères. - [Lu rassemblant le protocole de Blastocysts]

Le protocole décrit une méthode pour rassembler des zygotes des souris femelles enceintes. Les zygotes peuvent alors être utilisés pour le microinjection. - [Lu rassemblant Zygotes et retirant des cellules de cumulus avec le protocole d'hyaluronidase]

L'information sur la détection de l'oestre chez les souris. - [Détection lue de l'oestre chez les souris]

Le protocole décrit une méthode pour désagréger les embryons et le missile aux performances améliorées des blastocysts dans différentes cellules. - [Embryons de désagrégation lus de Fendage-Étape et la masse intérieure de cellules de Blastocysts dans différentes cellules]

Le protocole fournit à des méthodes pour la fixation des embryons et des tissus de souris le paraformaldéhyde, le fixatif de Bouin, ou la solution de methanol/DMSO. - [Fixation lue de protocole d'embryons et de tissus de souris]

L'isolement des tissus extraembryonic permet à on d'étudier le développement normal de souris aussi bien que la base moléculaire des défauts qui entraînent la mort foetale. Ce protocole décrit une méthode pour isoler les membranes extraembryonic des souris enceintes. - [Lu isolant le protocole Extraembryonic de membranes de souris]

Isolement du clip vidéo d'embryons de souris. - [Isolement lu du clip vidéo d'embryons de souris]

Le protocole décrit une méthode pour faire des pipettes de possession, pour être utilisé pour le microinjection. - [Lu faisant la possession introduit à la pipette le protocole]

Le protocole décrit la détermination des configurations utiles avec l'extracteur P-97 de Sutter pour faire des pipettes d'injection pour le microinjection. - [Lu faisant l'injection introduit à la pipette le protocole]

Le protocole décrit une méthode pour faire des pipettes à partir des capillaires en verre dur. - [Lu faisant des pipettes à partir du protocole de capillaires en verre dur]

1 transfert d'embryon de cellules dans la souris femelle réceptive pseudopregnant. - [Transfert lu d'embryon de souris dans le protocole réceptif de Pseudopregnant]

Considérations en prévoyant une colonie pertinente de souris pour la production transgénique. Inclut : Contrainte de souris ; Taille de colonie ; Efficacité de la superovulation ; Convenance parentale ; Pseudo-grossesse. - [Lu prévoyant une colonie pertinente de souris]

Le protocole décrit une méthode pour préparer les pipettes siliconized. De telles pipettes réduisent au maximum la perte d'embryons ou de tissus embryonnaires pendant le transfert. - [Lu préparant Siliconized introduit à la pipette le protocole]

Le protocole fournit des méthodes et incline pour sectionner des embryons de souris et transférer les sections à une glissière de microscope. - [Lu sectionnant le protocole d'embryons de souris]

Le transfert de Blastocyst est habituellement exécuté pendant 24 heures après l'agrégation, quand les morulae ont les blastocysts augmentés devenus, et en fonction le même jour comme injection. Un peu de temps est indiqué entre l'injection et le transfert pour permettre aux blastocysts re-d'augmenter. Inclut : Le destinataire de souris ; Le transfert. - [Transfert lu de Blastocysts injecté au pseudo protocole enceinte de souris]

Protocole pour l'hybridation in situ de support entier de la souris. Incluses : Préparation de la sonde ; Observations générales ; Préparation des embryons ; Hybridation in situ. - [Hybridation in situ lue de support entier de protocole de souris]