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Escrito y puesto al día marcha de 2008 por Moleculardude. Copyright 2007/2008.
Definición: SDS-PAGE es una abreviatura para el electrophoresis del gel de polyacrylamide del sulfatododecylde sodio ( SDS).
SDS-PAGE es una técnica molecular de la biología usada para separar las proteínas por consiguiente por talla. SDS-PAGE también puede separar las moléculas de la DNA y del RNA.
En cuál es probablemente la técnica más de gran alcance para resolver mezclas de la proteína, las proteínas se exponen al detergente iónico SDS (el dodecylsulfate del sodio) antes y durante del electrophoresis del gel. El SDS desnaturaliza las proteínas, haciendo las proteínas multimric disociar en sus subunidades, y todos los encadenamientos del polipéptido son forzados en conformations extendidos con relaciones de transformación similares de charge:mass. El tratamiento del SDS por lo tanto elimina los efectos de diferencias en dimensión de una variable de modo que la longitud de cadena, que refleja la masa, sea el determinante único del índice de la migración de proteínas en electrophoresis del polyacrylamide del SDS-.
Incluso los encadenamientos que diferencian en peso molecular por menos de 10 por ciento se pueden separar por esta técnica. Por otra parte, el peso molecular de una proteína se puede determinar por la comparación a una escala de la proteína o a la escala del peso molecular que se ejecuten en el mismo gel.
(véase el cuadro 1)

Cuadro 1. Este gel de la acrilamida se utiliza para separar las proteínas. Los puntos coloreados son las etiquetas de plástico de la esta'ndar-talla, que son prestained. Esto se utiliza generalmente para hacer una mancha blanca /negra occidental. Las proteínas se transfieren a una membrana y después se detectan con un anticuerpo a una proteína específica.
SDS-PAGE, electrophoresis del gel de polyacrylamide del sulfato dodecyl de sodio, es una técnica usada en bioquímica, genética y biología molecular para separar las proteínas según su movilidad electrophoretic (una función de la longitud del encadenamiento del polipéptido o del peso molecular así como el plegamiento de la proteína de una orden más alta, modificaciones del posttranslational y otros factores).
La solución de las proteínas que se analizarán primero se mezcla con SDS, un detergente aniónico que desnaturalice secundario y no–las estructuras–terciarias conectadas disulfuro, y aplica una carga negativa a cada proteína en proporción con su masa. Sin el SDS, diversas proteínas con los pesos moleculares similares emigrarían diverso debido a las diferencias en la relación de transformación total de la carga, pues cada proteína tiene un detalle de la punta isoeléctrica y del peso molecular a su estructura primaria. Esto se conoce como PAGINACIÓN nativa. La adición del SDS soluciona este problema, como ata a y revela la proteína, dando una carga negativa uniforme cercana a lo largo de la longitud del polipéptido.
Lazo del SDS en una relación de transformación de aproximadamente 1.4 g SDS por la proteína de 1.0 g (aunque las relaciones de transformación obligatorias pueden variar a partir 1.1-2.2 de la proteína de g SDS/g), dando una relación de transformación aproximadamente uniforme de mass:charge para la mayoría de las proteínas, para poder asumir la distancia de la migración a través del gel para ser relacionado directamente con solamente la talla de la proteína. Un tinte que sigue se puede agregar a la solución de la proteína para permitir que el experimentador siga el progreso de la solución de la proteína a través del gel durante el funcionamiento electrophoretic.

El electrophoresis es una técnica para separarse, o moléculas de resolución en una mezcla bajo influencia de un campo eléctrico aplicado, también llamada movilidad electrophoretic. Las moléculas disueltas en un movimiento del campo eléctrico, o emigran a una velocidad determinada por su relación de transformación de charge:mass. Por ejemplo si dos tienen la misma masa y forman, la que esta' con la mayor carga neta se moverá más rápidamente hacia un electrodo. La separación de moléculas pequeñas, tales como aminoácidos y nucleotides, es una de las muchas aplicaciones del electrophoresis. En este caso, una gota pequeña de la muestra se deposita en una tira del papel de filtro o del otro substrato poroso, que se remoja con una solución que conduce. Cuando un campo eléctrico se aplica como los extremos de la tira, las moléculas pequeñas disolvieron en el movimiento de la solución que conducía a lo largo de la tira en una tarifa que correspondía a su magnitud de su carga.
Porque muchas proteínas o ácidos nucleic que diferencian de tamaño y dimensión de una variable tienen relaciones de transformación casi idénticas de charge:mass, el electrophoresis de estas macromoléculas en la solución da lugar a poco o nada de separación de las moléculas de diversas longitudes. Sin embargo, la separación acertada de proteínas y de ácidos nucleic se puede lograr por el electrophoresis en los varios geles (suspensiones semisolid en agua) más bien que en una solución líquida. La separación electrophoretic de proteínas se realiza lo más comúnmente posible en geles de polyacrylamide. Estos geles son echados entre un par de las placas de cristal polimerizando una solución de los monomers de la acrilamida en polyacrylamidechains y simultáneamente cross-linking los encadenamientos en una matriz semisolid. La talla del poro de un gel puede ser variada ajustando la concentración del polyacrylamide y del reactivo de reticulación.
Cuando una mezcla de proteínas se aplica a un gel y a una corriente eléctrica aplicados, proteínas más pequeñas emigran más rápidamente proteínas que más grandes a través del gel. El índice del movimiento es influenciado por la talla’del poro del gel s y la fuerza del campo eléctrico. Los poros en un gel de polyacrylamide altamente reticulado son absolutamente pequeños. Tal gel podría resolver las proteínas y los peptides pequeños, pero las proteínas grandes no podrían moverse a través de él.
Según lo mencionado, las proteínas se mezclan con el SDS un detergente aniónico que los lazos a las proteínas y desnaturalicen su estructura terciaria secundaria y no-disulfuro-conectada con la adición del calor. El SDS también aplica una carga eléctrica negativa uniforme a cada proteína en proporción con su masa.
Si el SDS no fuera utilizado en la separación, las proteínas con los pesos moleculares similares emigrarían diferentemente en el gel debido a las diferencias en su masa cargar relaciones de transformación. Pues las proteínas se separan usando la corriente eléctrica y pore talla de la matriz del gel, las diferencias en cargas (además de masa) desempeñarían un papel en la separación.
Un tinte que sigue se puede agregar a la solución de la proteína para permitir que el experimentador siga el progreso de la solución de la proteína a través del gel durante el funcionamiento electrophoretic.





El dissappearing de Immidiate de vendas en la
DNA que ordena los geles después de que la plata hi
el mancharse de mi amigo esté haciendo frente a un
problema con mancharse de plata de ordenar se gelifica en cuáles son
las vendas de la muestra de la DNA junto con las vendas de la etiqueta
de plástico...
Dos vendas de cerca de la migración en
SDS-PAGE se gelifican
hola. ¿Ahora no
porqué solamente veo dos vendas cercanas de la migración en el gel
sds-page. porqué dos vendas muy cerca? Generalmente i ningún
consigue dos vendas, generalmente una venda...
¿El hervir del SDS de muestras métodos
alternativos?
odio hervir mis muestras mientras que
consigo los agregados de las proteínas que se ejecutan cerca de la
tapa de los geles también si usted está utilizando dyes/probes
específico etc que usted desea...
¿El rewet I la membrana en metanol... es Ab
ido?
En una exposición de noche que intenta
detectar una proteína baja de la abundancia, mi membrana desecada
alrededor de los bordes así que del rewet de I en metanol... es mi no
del Ab...
El SDS PAGINA la valoración de la
concentración de la proteína
satisface ayuda esta
persona: Tengo un problema con mi PAGINACIÓN del SDS.
Estimo la concentración de la proteína por las dilusiones del
uso dos de BCA method.I de la proteína para...
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