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Antikörper-Bakteriophagenausdruck-Protokoll unter Verwendung 96 wohler Mikrotiter-Platten

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Antikörper-Bakteriophagenausdruck-Protokoll unter Verwendung 96 wohler Mikrotiter-Platten

Datum hinzugefügt: 2. März 2008 11:02: 04 P.M.
Autor:
Kategorie: Antikörper-Protokolle

Antikörper-Bakteriophagenausdruck-Protokoll-Prozedur

  1. Fügen Sie μl 100 des TYE Mediums den Vertiefungen einer Rundbodenmikrotiterplatte mit 96 Vertiefungen hinzu (Nunc).
  2. Übertragen Sie einen Impfstoff von den einzelnen Kolonien der ausgewählten Bakteriophagenbibliothek mit einem sterilen Toothpick (sehen Sie Spitze #1 und #2).
  3. Brüten Sie die Platte auf einer rüttelnden Plattform (300 U/min) an 30°C über Nacht aus (sehen Sie Spitze #3).
  4. Fügen Sie μl 50 TYE (+) des Glyzerins jedem Vertiefung hinzu und mischen Sie durch trituration. Dieses ist die Vorlagenplatte.
  5. Übergangs2 μl von der Vorlagenplatte zu einer anderen Mikrotiterplatte mit 96 Vertiefungen, die μl 150 von TYE Media pro Vertiefung enthält.
  6. Wickeln Sie die Vorlagenplatte in der Plastikverpackung ein und speichern Sie an -80°C.
  7. Brüten Sie die zweite Platte auf einer rüttelnden Plattform (300 U/min) an 37°C aus, bis die optische Dichte bei 600 Nanometer der Wellenlänge (OD600) ungefähr 0.5 ist (sehen Sie Spitze #4).
  8. Fügen Sie μl 50 der TYE Media hinzu, die 2 x 109 pfu/ml Helferbakterium enthalten (M13K07, R408 oder VCSM13) jedem Vertiefung (sehen Sie Spitze #5).
  9. Platzieren Sie die Platte an 37°C für Minute 30 (sehen Sie Spitze #6).
  10. Zentrifugieren Sie die Platten bei 2.700 U/min (1.200 X g) für Minute 10 mit Adaptern eines Beckman™ GH-3.8 Rotors und der Mikrotiterplatte.
  11. Saugen Sie die supernatants an und setzen Sie die bakteriellen Tabletten in μl 150 TYE (-) der Glukose erneut aus (sehen Sie Spitze #7).
  12. Brüten Sie die Platte auf einer rüttelnden Plattform (300 U/min) an 30°C über Nacht aus (sehen Sie Spitze #3).
  13. Zentrifugieren Sie die Platten bei 2.700 U/min (1.200 X g) für Minute 10 mit Adaptern eines Beckman™ GH-3.8 Rotors und der Mikrotiterplatte.
  14. Gebrauch 50 μl der supernatants für ELISA Probe.

Bakteriophagenbildschirmanzeige-Antikörper-Ausdruck-Buffer-Rezepte

 
TYE (-) Glukose    5 g NaCl
Bereiten Sie sich in 1 Liter ddH2O vor
10 g Bacto Hefe-Auszug (Difco)
Fügen Sie Ampicillin 100 μg/ml hinzu
16 g Bacto Trypton (Difco)
Kühlen Sie zu 55°C ab
Zu entkeimen Autoklav
TYE (+) Glyzerin    Kühlen Sie zu 55°C ab
16 g Bacto Trypton (Difco)
5 g NaCl
Bereiten Sie sich in 1 Liter ddH2O vor
30% (v/v) Glyzerin
Fügen Sie Ampicillin 100 μg/ml hinzu
10 g Bacto Hefe-Auszug (Difco)
Zu entkeimen Autoklav
Fügen Sie Glukose 2% hinzu (W/V)
TYE Media    Kühlen Sie zu 55°C ab
16 g Bacto Trypton (Difco)
5 g NaCl
Bereiten Sie sich in 1 Liter ddH2O vor
Fügen Sie Ampicillin 100 μg/ml hinzu
10 g Bacto Hefe-Auszug (Difco)
Für Platten hinzufügen Sie 15 g Bacto den Nährboden (Difco) bevor Sie sterilisieren
Zu entkeimen Autoklav
Fügen Sie Glukose 2% hinzu (W/V)
 

Antikörper-Bakteriophagenausdruck-Methoden-Materialien benötigt:



  • Natriumchlorid
  • Bacto Trypton
  • Glyzerin
  • Ampicillin
  • Glukose
  • Bacto Hefe-Auszug

Protokoll-Spitzen



1. Dieses Bakterium wird nachdem einige Umläufe der Auswahl berechnet und das Bakterium darstellt, die Affinität für das Antigen des Interesses haben.

2. Jede Mikrotiterplatte sollte die folgenden Kontrollen einschließen:
   a. Gut von den Zellen, das nicht phagemid enthält
   b. Gut von den Zellen, die pHEN1 ohne Antikörpereinsatz enthalten
   c. Gut von den Zellen, welche die anzeigenden irrelevanten Antikörperbakteriophagenfragmente enthalten (nicht-ausgewählt)

3. Um Verdampfung zu verringern, sollten Mikrotiterplatten in einen geschlossenen Kasten auf feuchte Papiertücher gelegt werden. Platzieren Sie nicht den Kasten nah an dem Ventilator des Brutkastens. Prüfen Sie die Mikrotiterplatten, um dass das Rütteln zu garantieren, nicht Vertiefungen Kreuz-verschmutzt.

4. Diese Ausbrütung nimmt ungefähr 2.5 Stunde.

5. Das Verhältnis des Helferbakteriums zum Bakterium sollte 20 sein: 1.

6. Ausbrütung an 37°C wartet pili. Das Vorhandensein der Glukose im Medium hemmt PIII Proteinproduktion und erlaubt pilus Ausdruck.

7. Fügen Sie Kanamykin 25 μg/ml für Helfer Bakteriophagen-M13K07 oder VCSM13 hinzu. Die Auslassung der Glukose vom Medium erlaubt undichten Ausdruck des PIII Proteins unter der Steuerung des LacZ Förderers.

Referenzen für Bakteriophagenbildschirmanzeige-Protokoll

Gegründet auf dem Protokoll durch Andrew Bradbury des Alamos-nationalen Laboratoriums.

Bakteriophagenbildschirmanzeige: Eine praktische Annäherung. Eds. T. Clackson und H. Lowman. Universität von Oxfords-Presse, (2001)
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