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Protein und Antikörper Microarrays
Abfragung Methoden und unspezifische
Schwergängigkeit
Unspezifische Schwergängigkeit zur Reihe muß
herabgesetzt werden und dieses wird gewöhnlich getan, indem man die
Reihen in einem gegründeten Buffer des Tierserums Albumin (BSA)
untertaucht (31).
das Parameter-Binden und die Speicherung auf Proteinreihen
fährt über die thermodynamisch angetriebene verbindliche Einheit
fort, die zur Hybridation der Nukleinsäureziele zu den Prüfspitzen
ähnlich ist. Jedoch ist die Abfragung der verklemmten
Ziele zu den Proteinen beträchtlich komplizierter als die DNA der
microarray Abfragung (9). Aktuell wird eine Vielzahl der
Abfragung Methoden überprüft. Z.B. wurde ELISA zuerst
verwendet, um Proteine für Filterreihen (66.67) und Glasreihen (68)
zu entdecken. ELISA gegründete Abfragung Methoden haben
den Nachteil der Nichtbesonderheit der Protein-Antikörper
Interaktionen und führen zu viele falsche Positive. Das
Radioisotopbeschriften wurde von Ge et al. verwendet. (22), Radioisotop, das
beschriftet, um Protein- Protein–, Protein
DNA–, Protein- Droge–interaktionen zu
studieren auf Filterreihen. Zhu et
al.. benutztes Radioisotop, das beschriftet, um
Kinaseproben der unterschiedlichen Substrate durch das Verwenden der
gereinigten Hefekinaseproteine auf einer Reihe (6) zu leiten. Die bevorzugte Methode der Abfragung ist
Fluoreszenzabfragung, weil diese Methoden im Allgemeinen sicher sind,
extrem empfindlich, einfach und kann sehr hohe Zerlegung haben. Diese Abfragung Methoden sind auch mit microarray
Standardscannern kompatibel. Im Allgemeinen ist ein Chip
irgendein, das direkt mit einem Leuchtstoffmolekül geprüft wird
(z.B. ein fluorescently beschriftetes Protein oder ein kleines
Molekül, durch das Verwenden einer etikettierten Prüfspitze (z.B.
Biotin), das in einem zweiten Jobstep mit einem fluorescently
beschrifteten Affinität Reagens (z.B. streptavidin) (16.56) dann
entdeckt werden kann. Eine andere Leuchtstoff beschriftende
Methode ist Rollenkreisverstärkung (RCA), die auch extrem empfindlich
ist (32).
Obgleich die proteomes unter Vergleich auf eine vergleichbare
Art und Weise mit fluorophores beschriftet werden können, ist die
Reproduzierbarkeit dieser chemischen Reaktionen schlecht und Störung
mit den Protein-Antikörper Interaktionen Geschenken eine zusätzliche
Kompliziertheit (9). Auch das nichtgleichförmiqe Beschriften
der Proteine kann adressiert werden, indem man eine Doppel-Farbe
ratiometric Probe durchführt, in der ein interner Standard für jedes
Zielprotein anwesend ist, das (9) gemessen wird. Ein
Nachteil der beschriftenden Proteine mit fluorophores ist eine
Verkleinerung der quantitativen Genauigkeit der Probe, da
Gesellschaftsgründung des Kennsatzes die Bindefähigkeiten der
Proteine ändern kann (9).
Obgleich beschriftende Methoden Abfragung des direkten
Proteins noch allgemein verwendet werden, hat die tatsächlichen
erwähnten Probleme den zunehmenden Gebrauch von Methoden Abfragung
des Kennsatzes frei für Protein microarrays ergeben. Diese Methoden sind Massenspektrometrie (MS),
Atomkraftmikroskopie (Flughandbuch) (70) und
Oberflächenplasmonresonanz (SPR) (71).
Nicht-beschriftende Methoden haben Vorteile als direkte
Abfragung Annäherung für Antikörper microarrays, da das Beschriften
der Moleküle Proteinaktivität beeinflußt. SELDI
(Oberfläche-erhöhter Laser desorption/ionization)
Massenspektrometrie ist verwendet worden, um von geringer Dichte
Reihen der erfaßten Proteine (69) zu entdecken. Proteine werden
auf einer Metalloberfläche Reihe (SELDI Proteinreihe) erfaßt und
werden mit einem Laserstrahl verdunstet. Die Analyse, die
Massenspektrometriedaten verwendet, wird dann durchgeführt, um die
Identitäten dieser Proteine aufzudecken.
AtomGebrauch-Oberfläche Methode der kraftmikroskopie
(Flughandbuch) topologische Änderungen, zum der erfaßten Proteine
auf einer Antikörperreihe (70) zu kennzeichnen. Wenn
Kaninchen IgG auf einer Goldoberfläche stillgestellt wird und an
seine höflichen Antikörper, Ziege Ameise-Kaninchen IgG, Flughandbuch
bindet, entdeckt die Zunahme der Höhe, und kann folglich
Interaktionen, zu binden zu messen. Gleichwohl, um die
Kinetik der Antigen- Antikörper–interaktionen zu
studieren, Echtzeitabfragung Methoden nützlich sind. Oberflächenplasmonresonanz (SPR) hat in ein vielseitiges
begabt Abfragung Hilfsmittel gereift, um die Kinetik der Empfänger
ligand–Interaktionen mit einer breiten Strecke der
Molekulargewichte, der Affinitäten und der verbindlichen Kinetik
(72-74) zu studieren. Kommerzielle SPR Chips sind jedoch ihre
Abfragung Zerlegung ist begrenzt vorhanden. Eine
Sensor-Oberfläche mit 64 einzelnen Immobilisierungsites in einer
einzelnen Flußzelle wurde entwickelt (75). Ein
Antikörperreihe Biosensor wurde auch entwickelt, um die Kinetik des
Antigens zu studieren binden mit einem planaren Hohlleiter als die
Abfragung Methode. Mit dieser Methode zeigte die Gruppe, daß
bedeutende Signalintensität von den Punkten erzielt werden könnte,
die im Durchmesser so klein sind wie 200 Millimeter.
Es wird folglich erwartet, daß diese Annäherung für
Hochdurchsatz und parallele Kinetikstudien verwendbar ist. (76).
Strecke der
Abfragung
Ein anderer Unterschied zwischen Protein und DNA
microarrays ist, daß Proteinkonzentrationen in einer einzelnen
biologischen Probe oder in den Zellen einige Ordnungen von magnitute
grösser als die für mRNAs sind. So müssen
Proteinspänedetektorsysteme eine sehr große Strecke der Abfragung
Operation bis zu – einem Faktor von 1014 haben, verglichen
bis 104 für mRNA. So wird ein Antikörper mit nanomolar
Affinität zu einem bestimmten Ziel durch das Vorhandensein dieses
Ziels bei micromolar Konzentrationen gesättigt und nicht kann pico-
oder femtomolar Zielstufen entdecken. Die seltenen und
reichlich vorhandenen Proteine so anpassen benötigt vermutlich
unterschiedliche Reihen (7.8.9).
Mehrfache Antikörper mit unterschiedlichen Affinitäten für
das Ziel können an den unterschiedlichen Bereichen der Reihe jedoch
Studien in Position gebracht werden haben gezeigt, daß nur 20% von
gekleideten Antikörpern Messen der Proteine bei niedrigen
Konzentrationen (33) zur Verfügung stellen.
Zunächst: Protein-Produktion für Protein-Reihen
Referenzen für Protein und Antikörper Microarrays
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Einleitung und Hintergrund zu den Protein-Chips und zu den Antikörper-Chips.
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