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Sterilisation

Wie man Forschungslaborwaren für mikrobiologische Studien entkeimt

Inhaltsverzeichnis:

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Was ist Sterilisation - Definition?

Sterilisation wird als die Zerstörung aller Formulare des Lebens definiert. Sie kann durch verschiedene Mittel erfolgt werden. In Bezug auf die praktischen Anforderungen des bakteriologischen Labors sind viele jener Mittel wie Elektrizität, Tageslicht, etc., von wenig Wert und werden in ihren Anwendungen begrenzt; andere sind zu den bestimmten Zwecken so gut angepasst, dass ihr Gebrauch fast völlig auf solche Anwendungen eingeschränkt wird. Die Grundregelmethoden, die häufig angewendet werden, sterilisieren (Hitze, Dampf und Druck - eine Kombination) und Chemikalie, gleichwohl das Sterilisieren am wirkungsvollsten ist, wenn es richtig durchgeführt wird

 

Die zwei allgemeinen Methoden der Sterilisation

Es gibt zwei Hauptmethoden der Sterilisation.

  • A) Körperlich
  1. Plasmolyse oder Plasmoptysis (z.B. der Gebrauch vom Salz).
  2. Trocknung.
  3. Trockene Hitze der Hitze (a); (b) feuchte Hitze.
  4. Licht (schließt UVuV-Licht ein).
  5. Filtration (normalerweise verwendet auf dem Mikronniveau für Bakterium).
  6. Dialyse.
  7. Zerkleinerung.
  • B) Chemikalie.
  1. Desinfektionsmittel, etc.

A)

Sterilisation durch körperliche Mittel

1) zerstören starke Lösungen Mikroorganismen, indem sie Wasser von ihren Zellen (Plasmolyse) z.B. in der Bewahrung der Nahrung durch starke Salz- oder Zuckerlösungen entnehmen. Die Mikroorganismen, die ein starkes Nährsubstrat gewöhnt werden, können plasmoplysis (Bersten der Zelle) erleiden wenn sie in einen weniger starken Medium gelegt werden. In jedem Fall wenn sie stufenweise den ändernden Bedingungen unterworfen werden, wird Tod verzögert oder verhindert.

2) ist Trocknung zu vielen Mikroben, espe cially die zerstörend, die nicht Sporen bilden. Z.B. Ps. Radicicola ist für Trocknung auf dem gewöhnlichen Bedeckenglas oder auf Baumwolle sehr empfindlich.

 

3).

Sterilisation durch trockene Hitze.

Dieses wird normalerweise als Bunsenbrenner im Labor verwendet, gleichwohl es einige Heizmethoden gibt:

  1. Sterilisation in einer blanken Flamme.
  2. Sterilisation in einer Ätherflamme.
  3. Sterilisation in einem Muffelofen.
  4. Sterilisation durch Heißluft.

1. In der Sterilisation in einer blanken Flamme,

(a) Die einfachsten Mittel der Sterilisierung eines Metallinstrumentes ist-, es zum roten Ness in einer Flamme zu erhitzen. Diese Methode wird immer für ster ilizing Platin, Kupfer, etc., Drähte und Eisen und Nickelspachteln, Zange, etc. angenommen.

Eine Platinnadel sollte vor Sterilisation, durch das Anhalten sie nahe der Flamme immer sorgfältig getrocknet werden. Dieses vermeidet zu spritzen, das Mikroorganismen zerstreut, besonders wenn feuchtes Material z.B. Fett oder Protein, auf der Nadel sofort in die Flamme gestoßen wird.

(b) Ein Instrument kann entkeimt werden, indem man es d.h. flammt indem man schnell es durch eine heiße Flamme führt. Diese Methode ist für die Instrumente, etc. nützlich, nachdem siepoliert die Oberflächen siepoliert hatte, die von den Knicken leer sind, in denen Mikroorganismen Zerstörung z.B. Messer, Glasstangen, Handgriffe der Platinnadeln, Münder der Reagenzgläser, Flaschen, Pipetten, etc. entgehen konnten.

(c) Tiefe Wunden werden durch Cautery mit einem Instrument entkeimt, das zu einer stumpfen roten Hitze erhitzt wird.

 

2.

Sterilisation in einer Äther-Flamme

Im Notfall, kleine Instrumente, Nadeln, etc., kann indem das Eintauchen sie im Äther oder im absoluten Spiritus und nach dem Abbau entkeimt werden, der die anhaftende Flüssigkeit beleuchtet und sie die Oberfläche der Instrumente aufbrauchen lässt. Wiederholen Sie den Prozess. Es kann dann sicher angenommen werden, dass der Apparat also behandelt worden steril ist.

3.

Sterilisation in einem Muffelofen

Porzellanfilterkerzen werden entkeimt, indem man sie zur weißen Hitze im Muffelofen erhitzt. Diese Methode der Sterilisation kann nicht auf Porzellanfilter mit Metallbefestigungen, wie Berkefeld Filtern zugetroffen werden.

Die Zerstörung der autopsied Tiere und der akkumulierten Abfälle des Labors wird auch gut in dieser Weise vollendet.

 

4.

Sterilisation durch Heißluft

Belastung durch Heißluft ist die übliche Methode der Sterilisierung aller Glaswaren, der Instrumente mit Metallhandgriffen, des etc., aber es ist- nicht für organische Vorpositionen, mit Ausnahme von Wollen, Baumwolle und Papier verwendbar.

Um leistungsfähige Sterilisation, die vorbereiteten Glaswaren, etc. zu versichern, muss in ein Gas oder elektrisch in einen lebhaften Ofen (einen Thermometer enthalten, der über 200 C. registriert) dessen Temperatur an ungefähr 150 C. eine Stunde lang aufrechterhalten wird, oder in 180 C. für 10 Minuten gelegt werden. Der Ofen muss bis 60 C. unten abkühlen gelassen werden, bevor man die Tür öffnet, um das Brechen der Glaswaren zu vermeiden durch Kaltluftstrom. Baumwolle, Wollen und Papier werden etwas bei dieser Temperatur versengt,

Apparat muss absolut sauber und trocken sein, bevor er entkeimt wird.

 

4.

Sterilisation durch feuchte Hitze

Sterilisation durch feuchte Hitze kann in einer von vier Möglichkeiten bewirkt werden:

  • 1. Durch kontinuierliche oder unterbrochene Heizung bei den niedrigen Temperaturen (56-80 C.).
  • 2. Durch kontinuierliche oder unterbrochene Heizung im Wasser bei 100 C.
  • 3. Durch kontinuierliche oder unterbrochene Heizung in flüssigem Dampf bei 100 C.
  • 4. Durch eine Heizung in überhitztem Dampf (Dampf unter Druck) bei den Temperaturen über 100 C., im Allgemeinen 115 C. (ungefähr 10 Ibs. Druck) oder 120 C. (ungefähr 15 Ibs.).

 

1.

Pasteurisierung: Sterilisation durch kontinuierliche oder unterbrochene Heizung bei den niedrigen Temperaturen

Einige Substanzen, die als Kulturmedia, seiend reich im flüchtigen Stoff oder in den anders chemisch instabilen Substanzen benutzt werden, können nicht bis 100 C. ohne eine markierte Änderung (z.B., Koagulation) und gewissermassen ein destruc tion ihrer Eigenschaften erhitzt werden; Blutserum, z.B.

Pasteur zeigte, dass solche Media das bessere ster sein können, das indem sie ilized ist, für eine lange Zeit sie bei einer niedrigen Temperatur (55-60 C.) als an einer Hochtemperatur (70 C. oder sogar 100 C.) für kurze Zeit erhitzen. In diesem Prozess ist Hitze nicht 'direkt, als Regel angewandt. Steuerung der Temperatur ist gewöhnlich mittels des Wassers erreicht, das zum gewünschten Grad erhitzt wird.

Verlängerte Heizung bei einer niedrigen Temperatur setzt Pasteurisierung fest. In der Praxis jedoch wird es gefunden, dass, zwecks alle Organismuspasteurisierung zu beenden COM sein muss, die mit der Methode der unterbrochenen Heizung geplant von Tyndall bined ist. Die Albuminous Media, die der Tyndall Methode unterworfen werden, müssen bei 37 C. achtundvierzig Stunden lang schließlich ausgebrütet werden, um alle Probenmaterialien zu beseitigen, die Verschmutzung zeigen.

2.

Sterilisation durch kontinuierliche oder unterbrochene Heizung im Wasser bei 100 C.

(a) Kontinuierliche Heizung. Wasser bei 100 C. zerstört die vegetativen Formulare des Bakteriums fast blitzschnell, und Sporen innen von fünf bis fünfzehn Minuten gewöhnlich, obgleich viele Sporen der beständigen Sorten nicht durch Heizung einiger Stunden bei dem 100 C.-Wasser beendet werden, das von der Abwasserverschmutzung vermutet wird, können sicher folglich einfach gemacht werden zu trinkenden Zwecken, indem man für einige Minuten kocht.

Diese Methode ist auf Metallinstrumente, Spritzen, Gummistopper, Gummi- und Glasschläuche und anderer kleiner Apparat anwendbar.

(b) Unterbrochene Heizung. (Tyndall Methode.) Tyndall beobachtete, dass bestimmte beständige Formulare in einer Infusion fanden, die vom Heu gebildet wurde, wurden zerstört nicht durch die Heizung der Infusion bei 100 C., sobald, selbst wenn die Temperatur während eines verlängerten Zeitraums gestützt wurde, dennoch, durch das Kochen sie für kurze Zeit an drei aufeinander folgenden Tagen, wurden alle lebenden Organismen zerstört. Seine Theorie war die, indem sie bei 100 C., die vege tative Formulare erhitzte, aber nicht wurden die Sporen beendet. Die letzteren keimen, während die Flüssigkeit abkühlt und werden während der zweiten Heizung beendet. Einige Sporen entgehen jedoch de Struction an der zweiten Heizung;

diese haben gekeimt, bis die dritte Heizung passend ist. Nach der dritten Sterilisation durch Hitze ist erreicht.

Die jetzt gegebene Erklärung ist jedoch, dass das widerstehen ance der Mikroorganismen stufenweise unter den Einfluss der wiederholten Heizungen gesenkt wird. Diese Grundregel der Heizung an drei aufeinander folgenden Tagen, ein entkeimt zu werden Medium bekannt jetzt als die Tyndall Methode der Sterilisation. In der allgemeinen Laborpraxis wird Dampf anstelle vom Wasser bei 100 benutzt. , aber dieses erfordert speziellen Apparat, während Wasser sich betriebsbereit zu den zur Hand Mitteln verleiht.

 

Die körperliche Art des Mediums, der außerordentliche Widerstand der Sporen bestimmter Sorten des Bakteriums oder beide in der Kombination, können, dass diese zeitweilige Heizung in einem längeren Zeitabschnitt vier, d.h. fünf, sechs, geweitermacht wird etc., Tage für die selben nacheinander benötigen oder ein längerer Zeitraum jedes Mal oder, dass der Zeitraum zwischen mittent Zwischenheizungen von twenty-four Stunden bis achtundvierzig Stunden verlängert wird.

Tyndalls Methode ist dadurch, dass Media des empfindlichen Aufbaus entkeimt werden können, ohne nicht wünschenswerte Änderungen zu produzieren, wie werden produziert häufig durch das hohe Tempera ture des autoclav wertvoll.

3. Sterilisation in flüssigem Dampf bei 100 C. kontinuierlich oder unterbrochen, (a) kontinuierliche Heizung. Das einfache Kochen oder die Belastung durch Dampf bei 100 C., obwohl die Berührung ausgedehnt wird, ist nicht eine zuverlässige Methode der Sterilisation. Wenn Mikroorganismen getrocknet worden sind, wird ihr Widerstand zu den Wärmewirkungen viel erhöht und ist besonders dieser der Fall, wenn sie mit Substanzen einer kolloidalen Natur gemischt werden. Bestimmte beständige Formulare des Protoplasmas bekannt als Sporen können möglicherweise nicht durch eine Heizung bis 100 C. zerstört werden, selbst wenn die Temperatur für sev eral Minuten aufrechterhalten worden ist.

(b) Unterbrochene Heizung. Allgemeiner Gebrauch für das ster ilization von Media.

Diese Grundregel der Sterilisation brachte durch Tyndallentdeckungen seine breiteste Anwendung in der bakteriologischen Arbeit mit dem Gebrauch des flüssigen Dampfs voran. Hochdruckdampf kann zum gutvorteil verwendet werden, wenn eine Zentralheizungstation vorhanden ist. Der arnold-Sterilisator gebraucht Dampf für den Sterilisationprozeß und verleiht sich betriebsbereit zur kontinuierlichen und unterbrochenen Methode.

4. Sterilisation durch überhitzten Dampf (unter Druck und folglich über 100 C.). Wasser, Spritzen, chirurgische Behandlungen, die Bettwäsche, Indiengummi Apparat, Filter, alte Bearbeitung, Kulturmedia, etc., verletzt nicht durch hohe termperatures, können schneller entkeimt werden, indem man im Dampf unter Druck erhitzt.

Belastung durch Dampf bei einer Temperatur von 115 C. für Zwanzig Minuten ist in den meisten Fällen genügend, Sterilisation zu versichern,

 

Aber einige Media, Kartoffel zum Beispiel, benötigen eine Temperatur von 120 C. für 10 bis fünfzehn Minuten. Es wird jetzt verwirklicht, dass die Media, die dieser Hochtemperatur unterworfen werden, hydrolytische Änderungen durchmachen, die sie unpassend für die Bearbeitung der empfindlicheren Mikroorganismen machen. Sterilisation im überhitzten Dampf wird in einem speziellen Apparat geweitermacht, der einen Autoklav genannt wird, der sein kann, also hinsichtlich des Durchlaufes durch direkten oder indirekten Dampf, der konstruiert ist. Das letztere ist für die Sterilisation von Media das wünschenswertere.

 

5)

Sterilisation durch (UV) Licht

Licht scheint, nach dem Produzieren der leistungsfähigen chemischen keimtötenden Mittel zu verfahren, vermutlich organisch pro Oxide, im mittleren, das Bakterium umgebend. Bestimmte Strahlen des Lichtes, des Blauen, des violett und ultraviolettes sind insbesondere zu lebenden Zellen zerstörend. Es ist zu diesen Strahlen, dass Sonnelicht seine desinfizierentätigkeit verdankt. Praktischer Gebrauch ist von den ultravioletten Strahlen in der Wassersterilisation gebildet worden, indem man die Fassbinder-Hewitt Quecksilber-Dampflampe einsetzte, die einen Quarz anstelle von einem Glasgefäß hat, da diese Strahlen nicht durch Glas überschreiten.

6)

Sterilisation durch Filtration

Sterilisation kann durch die Filtration der Gase oder der Flüssigkeiten durch Materialien erfolgt werden, die Mikroorganismen beibehalten.

Das beste Beispiel der Filtration der Gase ist der Gebrauch der Baumwolle anschließt die Flaschen und Gefäße, die Mikroorganismen enthalten. Die Baumwolle ist, genug porös, den notwendigen Austausch der Gase zu erlauben aber wird weder Staub noch fremde Mikroorganismen hereinkommen lassen. Die Sterilisation der Luft oder anderer Gase, wenn Vorder3d durch Baumwolle nach der Stärke der Baumwollschicht und auch nach der Kraft abhängen würde, die ausgeübt wurde.

Bestimmte Flüssigkeiten, die in der bakteriologischen Arbeit benutzt werden, können nicht sogar einer gemäßigten Menge Hitze unterworfen werden, ohne ihre Natur profund zu ändern. Um solch ein flüssiges steriles zu bilden, wird sie durch einen zylinderförmigen Behälter geführt, geschlossen bei einem Ende wie einem Reagenzglas und gebildet entweder vom porösen „Biskuit“ Porzellan, gebrannt stark und unglazed (Raumlandfilter) oder von der Kieselgur, von einer feinen Kieselerde (Berkefeld Filter) und bezeichnet einen Bougie oder als eine Kerze.

Die Poren der Feinfilter sind so klein, dass, während Flüssigkeiten und Körper in gelöster Form durch überschreiten, Mikroorganismen und die Flüssigkeitdurchläufe durch in keimfreien Zustand beibehalten werden.

 

Pasteur in seinem frühen Werk verwendete Pflasterplatten, wie der Entstörungsmedium, aber resultierend aus Chamberlands erforscht, poröses Porzellan ersetzt jetzt Pflaster. Das fein zerrissene Asbest, das fest in einem Gooch Tiegel gepackt wird, dient als bakterieller Filter lieferte die Schicht des Asbests ist genug stark. Die Filtriergeschwindigkeit ist normalerweise sehr langsam, weil die Poren des Filters so sehr minuziös sind; , um diese Nachteilentweder Aspiration oder -druck folglich zu überwinden wird im Allgemeinen beschäftigt, um sich den Prozess zu beeilen. Diese Methode kann filtierbare Organismen möglicherweise nicht ausschließen.

 

 

7)

Sterilisation durch Dialysis

In einer der neueren Methoden plante für die Vorbereitung der antirabic Impfstoffe, die der Impfstoff vorbereitet wird, indem man das Virus (Rückenmark eines rasenden Kaninchens) in einen Kollodiumbeutel legt und es in laufendem destilliertem Wasser dialysiert. Das lebende Virus wird zerstört, dennoch sind seine immunisiereneigenschaften beibehaltenes intaktes. Durchaus kann der gegenüberliegende Effekt unter einigem erhalten werden, welche verschiedenen Umstände. Wenn ein Kollodiumbeutel, der eine Aufhebung eines pathogenen Organismus enthält, in den Körperraum eines empfindlilchen Tieres gelegt wird, kommen die Organismen innerhalb des Beutels vorwärts und ernährt werden durch die Körperflüssigkeiten, die durch die halbdurchlässige Membrane zerstreuen.

GUMMIEREN, J.G.: Tollwut Hydrophobia. Eine Studie des örtlich festgelegten Virus, Ermittlung des M.L.D., vaccine Behandlung (Hogyes, Pasteur und dialysierter Impfstoff) und Immunitätstests. Journal der Infektionskrankheiten, Vol. XIV (1914), S. 33-52.

8)

Zerkleinerung-Sterilisation

Zerkleinerung oder die tatsächliche Zerquetschung der Mikrobenzellen wird für zum Demonstrieren der intrazellulären Enzyme gegriffen.

 

B.

Sterilisation durch chemische Mittel

1)

Sterilisation durch Disinfectants

Sterilisation durch DIS infectants hat aber begrenzter Gebrauch in der bakteriologischen Arbeit. Die Menge des Desinfektionsmittels notwendig, vorhandene Organismen in einem Nährmedium zu zerstören ist größer als die Menge, die notwendig ist, Vermehrung eines Organismus zu hemmen, der als Impfstoff nachher benutzt werden kann; der Medium wird folglich unbrauchbar gemacht.

  • 1. Desinfektionsmittel können für jeden möglichen Apparat benutzt werden, der nicht in direkten Kontakt mit Kulturmedia oder mit den in Untersuchung Organismen kommt. Örtlich festgelegte nichtflüssige DIS infectants müssen eingesetzt werden, da die Dämpfe, die durch löschbare Mittel abgegeben werden, das Wachstum der Organismen auf Kulturmedia hindern.
  • 2. Desinfektionsmittel sind im Allgemeinen Gebrauch für die Sterilisierung der Hände, Holzarbeit, für Behälter- und Sterilisierunginstrumente heraus waschen während der Impfung und anderer Experimente.

Als Beispiel, Formalin 1-1000 sind Quecksilber- Chlorverbindung, 1.5%, das 5% Phenol, 2% die Verbundlösung des Kresols, etc., preiswert und in vielen Fällen anpassungsfähig. Tinktur von iodin ist für Anstrichwunden wertvoll.

Die Common-Seifen und mehr besonders grüne Seife, haben einen keimtötenden Wert der Lage und diesen in Verbindung mit ihrer lösenden Tätigkeit nach Fetten und Protein, und die mechanische Reinigung, die ihren Gebrauch begleitet, schließt aus, ihnen einen wichtigen Platz unter den chemischen Desinfektionsmitteln zuzuweisen.

Die Desinfektionsmittel, die für die Sterilisierung der Haut vor Spalte lecting pus, Blut, etc., vom lebenden Thema benutzt werden, müssen sorgfältig gelöscht werden, durch das Teil gut waschen mit Spiritus, bevor man Material sammelt, andernfalls würde das Vorhandensein des Desinfektionsmittels materiell das folgende Wachstum der Organismen in der Kultur behindern.

3. Desinfektionsmittel werden auch sterilen Filtraten hinzugefügt, die nicht mehr als Kulturmedia benötigt werden. Zu diesem Zweck wird eine kleine Quantität irgendeines Desinfektionsmittels (wie thymol oder Kampfer) das ohne chemische Tätigkeit auf den Bestandteilen der Flüssigkeit ist, ausgewählt.

Eine Menge der Karbolsäure (0.5%) oder anderer Chemikalie wird häufig Impfstoffen, BAC-Ausdrücken, Seren, etc., zu den konservierenden Zwecken hinzugefügt.

4. Desinfektionsmittel werden manchmal benutzt, um eine Kultur zu entkeimen, wenn die Produkte der microorgansims unter inves tigation sind. Chloroform, Äther, Toluol, Öl des Knoblauchs oder des Senfes, etc., die durch Verdampfung danach abgetrieben werden können, gehören zu dem nützlichsten in diesem Zusammenhang.

 

2)

Sterilisation durch Antiseptics

Chemische Reagenzien wie gehören der Kategorie, die als Antiseptika bekannt ist, zerstören d.h. Substanzen, dessen Wachstum hemmen Sie, aber nicht bakterielle Lebensdauer, sind offensichtlich unbrauchbar.

Die Münder der Reagenzgläser, der Gärunggefäße, der Pipetten, des etc., werden gewöhnlich mit Baumwolle vor Sterilisation eingesteckt. Zu diesem Zweck ist Baumwolle, da sie preiswert und anpassungsfähig ist, dient, Mikroorganismen von der Luft herauszufiltern ideal, während ing die betriebsbereite Diffusion der Gase erlauben Sie, und nachher einmal verwendet ihm kann gebrannt werden.

Papier (gewöhnliche Zeitung) kann benutzt werden, um Glaswaren als Petrischalen, Tiefkultur Teller, Pipetten, etc. einzuwickeln, möchte welches in sterilen Zustand speichern und für, welche Baumwolle nicht anpassungsfähig ist.

Glaswaren werden für die zerstörenden Mikroorganismen entkeimt, die auf seiner Oberfläche und oder auf in der Baumwolle oder im Papier benutzt werden beziehungsweise für das Einstecken oder die Verpackung vorhanden sind. Nachdem Sterilisation die Baumwolle und das Papier dienen, Mikroorganismen am Betreten und an der Verseuchung der sterilen Geräte zu verhindern.

Trocknen Sie Hitze, zwar nicht als wirkungsvolles ein Mikrobezerstörer als feuchte Hitze, ist zur Sterilisation der leeren Kulturflaschen, der Pipetten und anderer Glaswaren anpassungsfähiger. Heißluftsteril ization vollendet nicht nur die Sterilisation der Glaswaren, der Baumwollstecker, des etc., aber „stellt“ die Stecker ein, damit sie mit größerem Teildienst gehandhabt werden können.

Alle Glaswaren müssen absolut sauber und trocken sein oder Spuren von Spiritus enthalten, nur bevor sie für Sterilisation sich vorbereiten; andernfalls kann Sterilisation nicht erreicht sein. Wenn betrachten Sie, ist fähige Feuchtigkeit in den Reagenzgläsern, in den Flaschen, in etc. anwesend, verdunstet sie nicht während des Heißluftsterilisationprozesses, und es ist, dass die Temperatur solcher feuchten Teile der Glaswaren nicht erreicht, oder am leastwill 100 sehr, offensichtlich C. nicht zu übersteigen.

Richtungen. Reagenzgläser und Flaschen werden mit Baumwolle eingesteckt. Die gewöhnlichen Zangen werden zu diesem Zweck benutzt. (A-Glasstange kann auch benutzt werden.) Ein kleines Stück Baumwolle wird auf dem Rand mit der Zange gegriffen und eingesetzt im Mund des Reagenzglases. Stecker sollten in Reagenzgläser von 3 bis cms 4 projektieren. und von cms 3 bis 5. In den Ansatz der Flaschen, entsprechend der Größe der Flasche. Nur eine Menge Baumwolle sollte aus dem Mund heraus projektieren, der genügend ist, den gedrehten Außenteil (Lippe) der Reagenzgläser oder der Flaschen vor Staub zu schützen.

Ein „Weihnachten-Baum“ Effekt soll vermieden werden. Stecker sollten nicht sein, also fest hinsichtlich seien mit Schwierigkeit noch so lose hinsichtlich des Angebots kein Widerstand zum Abbau gelöscht Sie. Eine wenig Erfahrung genügt, die Menge von Baumwolle zum Gebrauch und zur Festigkeit zu zeigen, mit denen der Stecker passen sollte.

Baumwolle steckt für Reagenzgläser, Flaschen, etc., kann gerollt werden ein. Diese Art des Steckers ist beständiger und kann verwendet werden mehrmals. Lassen Sie den Ausbilder die Methode des Rollens demonstrieren.

Für Heißluftsterilisation können die Reagenzgläser, die mit Baumwolle eingesteckt werden, in den großen Bündeln gebunden werden, oder gelegt worden in Drahtkörbe (nie in den Achatcup), steckt Baumwolle oben ein. Einige Reagenzgläser sollten nicht in einen großen Drahtkorb oder in eine Draht Testgefäß Zahnstange gelegt werden, da zu sparen ist notwendig, Platz im Heißluftsterilisator.

Petrischalen werden separat im Papier eingewickelt und zusammen gebunden in den Sets von drei, bildet ein Blatt Zeitung vier Papiere von der korrekten Größe für die Verpackung der Petrischalen und ist billig.

Drei oder mehr Petrischalen können zusammen eingewickelt werden, wenn alle gleichzeitig verwendet werden sollen. Markieren Sie jedes einfach mit der Schreibtischzahl.

Pipetten. Legen Sie ein Stück Baumwolle in die Unterseite eines Reagenzglases, stecken Sie die Oberseite nur der Pipette mit Baumwolle (nicht zu fest}, Verlassen aber wenig der Baumwolle ein, die heraus projektiert. Wickeln Sie einen kleinen Teil Baumwolle um das niedrigere Drittel der Pipette ein, setzen Sie die Pipette in das Reagenzglas bis die Spitzereste auf der Baumwolle ein und die Baumwolle bilden, die Aufschlag als Stecker für das Gefäß einwickelt.

Wickeln Sie Pipetten also vorbereitet in Papier (eine Schicht) ein und binden Sie und markieren Sie sie einfach mit der Schreibtischzahl.

Ein abgedeckter Metallkasten ist- häufig benutzt, damit Holdingpipetten entkeimt werden können. Das obere Ende der Pipetten werden mit Baumwolle eingesteckt, gesetzt die Pipette im Fall, das geöffnete Ende des Falles ein, der mit Baumwolle eingesteckt wird, und die ersetzte Abdeckung. (Diese letzte Methode wird nicht für den neuen Kursteilnehmer empfohlen, als die Notwendigkeit der vorsichtigen Technik, wenn man eine sterile Pipette vom Fall, ohne zu verschmutzen jenes Bleiben, ist schwierig, nach ihm zu beeindrucken löscht).

Gärunggefäße werden mit Baumwolle eingesteckt, wie für Reagenzgläser verwiesen; der Baumwollstecker sollte nicht in die Birne projektieren.

Tiefe Kulturteller werden einzeln im Papier eingewickelt, wie für Petrischalen verwiesen.

Plättchen und Bedeckengläser werden im Allgemeinen entkeimt, indem man flammt, aber, nur wie gebraucht.

Referenzen für Sterilisation

  1. EYRE: Bakteriologische Technik. Zweite Ausgabe (1913), S. 26-48. BESSON: Praktische Bakteriologie, Mikrobiologie und Serum-Therapie (1913), S. 3-27.
  2. MARSCHALL: Microbiology (1911), S. 64-67. EULER: Allgemeine Chemie der Enzyme (1912), S. 118-123. VORBEREITUNG DER ÜBUNGS-2. DER GLASWAREN FÜR STERILISATION

 

 

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